Учебная работа. Анестезия у экспериментальных животных

Учебная работа. Анестезия у экспериментальных животных

РЕФЕРАТ

ТЕМА:

АНЕСТЕЗИЯ У ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ ЖИВОТНЫХ

План:

Вступление

1. Оценка начального состояния звериного как объекта для общей анестезии.

2. Фармакологические средства, используемые для общей анестезий у экспериментальных звериных.

3. Препараты, применяемые для анестезиологического пособия у экспериментальных звериных

Перечень литературы

Вступление

прогресс современной медицины почти во всем должен экспериментальным исследованиям. Полностью это относится к хирургии, анестезиологии и реаниматологии, бурное развитие которых невообразимо без бессчетных сложнейших острых опытов. Тем не наименее, клиническая анестезиология все еще существенно опережает разработку способов анестезии у экспериментальных звериных.

В нашей стране и за рубежом запрещено проведение опытов без адекватной анестезии, в критериях полной миорелаксации без обезболивания и др. Создатели, публикуя свои результаты, должны указывать не только лишь вид и количество использованных звериных, да и применявшиеся виды обезболивания и эвтаназии.

совместно с тем опыт высококвалифицированного анестезиолога-клинициста нередко оказывается недостающим для решения задач, которые появляются при анестезиологическом обеспечении современных хирургических, патофизиологических, анестезиологических и остальных тестов. Это соединено со значительными физиологическими чертами звериных разных видов и пород, возраста и пола, различиями в переносимости общей анестезии и чувствительности к анестезиологическим продуктам, особенными методическими приемами, аппаратурой и инструментарием, внедрение которых нужно. Неведение либо недоучет этих особенностей могут определить выраженные нарушения гомеостаза у звериных, что в свою очередь затрудняет либо делает неосуществимой правильную интерпретацию результатов исследовательских работ.

1. Оценка начального состояния звериного как объекта для общей анестезии

Отбор и подготовка звериных к проведению опыта имеют принципиальное правило, проводят на больших звериных (собаки, телята, мортышки, свиньи), в то время как для исследования фармакологических препаратов наиболее комфортны маленькие лабораторные звериные (мыши, крысы, морские свинки). Определенные ограничения в выборе звериных появляются в связи с размерами, оснащенностью и санитарно-техническими критериями лабораторий. Принципно может быть моделирование различных патофизиологических состояний у звериных различных видов прямо до пресмыкающихся. Но в истинное время накоплен опыт, который дозволяет выполнить более адекватный целям опыта выбор доступных звериных.

Так, на собаках более целенаправлено учить воздействие ингаляционных и неингаляционных анестетиков на гемодинамику огромного и малого кругов, эффекты различных фармакологических средств при общей анестезии, патофизиологию искусственного кровообращения , метаболизм миокарда и легких, разные варианты медицинской погибели и оживления, ИВЛ и др. Собаки остаются более нередко изучаемыми лабораторными звериными [Осипов В.П., 1976; Степанян Е.П. и др., 1978; Герасимов Н.М. и др., 1983; Гиммельфарб Г.Н., Пермяков Н.К. и др., 1983; Гиммельфарб Г.Н., 1984]. Но при выбирании собаки в качестве объекта опыта следует держать в голове, что беспородные собаки наиболее выносливы в отличие от породистых, которые высокочувствительны к общим анестетикам и иным фармакологическим продуктам, плохо переносят хирургическую травму в критериях лабораторного содержания. Для сложных и долгих хирургических тестов наиболее подступают юные (2—5 лет) беспородные собаки.

На кошках и зайчиках почаще всего изучают фармакологические эффекты анестетиков, анальгетиков и миорелаксантов, воздействие их на центральную и периферическую нервную систему, конфигурации мозгового кровотока и метаболизма в критериях общей анестезии, закономерности восстановления мозговых структур при реанимации, анальгетические эффекты перидурально вводимых препаратов [Гиммельфарб Г.Н., 1984; Сачков В.И. и др., 1986; Aoki M. et al., 1986; Gibbin J. P. et al., 1986; Sheller M. et al., 1986].

Крысы и мыши являются комфортной моделью для исследования аналгезирующих и нейролептических препаратов, токсических и тератогенных эффектов анестетиков, воздействия крайних на метаболизм мозга , печени и остальных органов [Vina J. et al., 1986; Wood M. et al., 1986]. Довольно нередко на маленьких лабораторных звериных моделируют также разные варианты медицинской погибели и оживления организма [Пермяков Н.К. и др., 1983].

Подготовку экспериментальных звериных к общей анестезии следует начинать с наружного осмотра. При всем этом можно составить определенное внимание следует обращать на возраст и поведение звериного, его упитанность и массу тела, состояние глаз, зубов, дерматологического покрова, шерсти, частоту и нрав дыхания, интенсивность слюноотделения. К примеру, возраст собак можно приблизительно найти по зубам, которые к 4—5 годам утрачивают белизну и начинают стираться. Не считая того, для юных звериных типично горизонтальное направление роста шерсти на бедрах.

Кропотливый осмотр помогает выявить признаки болезней, которые нередки у лабораторных звериных. Почти все звериные мучаются приобретенными болезнями дыхательных путей и почек, специфичными инфекциями. Описаны даже случаи обретенных пороков сердца [Holland A., 1973]. Для приобретенных тестов целенаправлено отбирать звериных, прошедших 10— 12-дневную обсервацию. В этом периоде они имеют возможность приспособиться к условиям содержания в виварии, рациону питания. Их вакцинируют против чумы, вирусного гепатита, производят некие лабораторные исследования (анализ крови ). В протяжении всего времени обследования нужен неизменный контроль за общим состоянием звериного с целью выявления вероятных настораживающих конфигураций либо признаков заболевания .

Физикальное обследование звериных вызывает естественные затруднения у анестезиолога-клинициста. совместно с тем при составлении плана анестезиологического пособия экспериментальным звериным нужно знать индивидуальности системы наружного дыхания и кровообращения особей разных видов. Такие познания не только лишь помогают выявить звериных с любым болезнью, да и оценивать адекватность общей анестезии.

При выбирании объекта опыта и подготовке к анестезиологическому пособию и ИВЛ нужно учесть некие анатомо-физиологические индивидуальности звериных разных видов. к примеру, у собак весьма узкая плевра, потому при вскрытии в процессе опыта одной из плевральных полостей нередко возникает двухсторонний пневмоторакс [Гиммельфарб Г.Н., 1984].

Непростая анатомия дыхательных путей у зайчиков затрудняем интубацию трахеи и ИВЛ, но у их от грудины к перикарду идет мембранозная перегородка, которая дает возможность сделать доступ к органам средостения без пневмоторакса [Holland A., 1973]. Не считая того, у звериных этого вида отсутствует рвотный центр и не возникает соответственная реакция па рвотные средства.

У жвачных звериных очень развиты бронхиальные железы, потому вещества, усиливающие их секрецию, следует применять с особенной осторожностью. Напротив, у свиней бронхиальные железы не достаточно чувствительны к стимулирующим фармакологическим продуктам [Мозгов И. Е., 1979].

Истощенные звериные существенно ужаснее переносят общие анестетики и остальные фармацевтические средства, потому если анестезиологическое пособие приходится оказывать плохо упитанному звериному, дозы препаратов для премедикации и анестетиков должны быть снижены. Это относится и к утомленным звериным. В связи с сиим за 4—6 дней до опыта звериное следует перевести на высококалорийное питание. Для увеличения резистентности к инфекции в рацион собак целенаправлено включать пищевые дрожжи (около 100 г в день) и рыбий жир (20 г). Перестают подкармливать звериных за 15—18 ч до опыта.

Анестезиолог, проводящий пособие, должен дифференцированно подбирать дозы медикаментозных средств для особей различного возраста. Обозначенные в специальной литературе и реальном руководстве дозы препаратов (см. ниже) употребляются, как правило, у половозрелых юных звериных. Старенькые звериные существенно ужаснее переносят общую анестезию, в особенности с внедрением массивных ингаляционных анестетиков, к примеру фторотана. У старенькых собак, в особенности породистых, комбинированную анестезию рекомендуется проводить ингаляционными и неингаляционными анестетиками в маленьких дозах в сочетании с наркотическими анальгетиками. При всем этом удается понизить токсический эффект препаратов [Гиммельфарб Г.Н., 1984]. Определенные трудности могут появиться при работе с неполовозрелыми звериными, которые очень чувствительны к анестезиологическим средствам. В схожих ситуациях почти все зависит от личного опыта экспериментатора, умения подобрать минимальную эффективную дозу анестетика.

Для экспериментальных моделей в хирургии, анестезиологии и реаниматологии половые отличия не имеют существенного значения, так как особи различного пола фактически идиентично реагируют на различные медикаментозные средства. Но у беременных звериных симпатомиметики и вещества, вызывающие повышение притока крови к сосудам тазовой области, могут определить аборт.

В конце концов, не следует забывать о конфигурациях чувственного состояния звериных при переводе из вивария в непривычную обстановку операционной, в ответ на предварительные манипуляции (привязывание, подключение датчиков, венепункция и т.д.). Ненужные реакции отлично предутверждает адекватная премедикация. Но в ряде всевозможных случаев 2. Фармакологические средства, используемые для общей анестезий у экспериментальных звериных

Для проведения анестезиологического пособия экспериментальным звериным в истинное время употребляют широкий набор фармацевтических средств, обычных для медицинской анестезиологии. С практической точки зрения более важны сведения о хороших дозах препаратов для премедикации, вводной и главный анестезии у определенного вида звериных.

Атропин обширно употребляют для премедикации. В целом действие атропина на звериных аналогично его эффекту у человека. Он подавляет саливацию и секрецию носоглоточной слизи, расширяет бронхиолы, дает положительный хронотропный эффект, стремительно всасывается при подкожном внедрении, оказывает довольно обширное терапевтическое действие. Маленькие млекопитающие наименее чувствительны к атропину, чем большие звериные и человек

Морфин в экспериментальной анестезиологии употребляют для премедикации. У большинства звериных он вызывает включающий модифицированное состояние психики и разные соматические чувства человека»>состояние психики и различные соматические ощущения человека), дает седативный эффект. Анальгетические характеристики морфина различны у звериных различных видов [Мозгов И.Е., 1979]. Продукт просто всасывается из подкожной жировой клетчатки. Может быть внутримышечное введение его. У неких звериных действие морфина имеет специальные индивидуальности. Так, у кошек просто возникает передозировка, сопровождающаяся картиной «маниакального возбуждения»: обостряются зрение, слух, осязание, потом возникает беспокойство, растут подвижность и злость. Вослед за сиим чувствительность понижается, развиваются судороги

Промедол можно включать в схему премедикации кошек и собак заместо морфина. Продукт наименее токсичен, в наименьшей степени подавляет дыхание, но владеет наиболее слабенькими анальгетическими качествами. Может вводиться подкожно, внутримышечно и внутривенно.

Довольно обширное распространение в современной экспериментальной анестезиологии получил способ нейролептаналгезии, препараты для которой могут употребляться как в качестве премедикации, так и для поддержания общей анестезии у разных звериных. Как правило, фентанил и дропе-ридол вводят сразу. У больших звериных, если планируется ИВЛ, производят внутривенное введение. У маленьких звериных препараты для нейролептаналгезии можно использовать внутриперитонеально с сохранением спонтанного дыхания. Показано, что внедрение для премедикации у собак с массой тела от 18 до 25 кг фентанила в количестве 6—8 мл 0,05% раствора и дроперидола в количестве 8—10 мл 0,25% раствора обеспечивает выраженный седативный эффект без существенных нарушений дыхания и кровообращения , но аналгезия при всем этом выражена равномерно [Гиммельфарб Г.Н., 1984]. Введение фентанила без дроперидола вызывает у собак ненужные конфигурации гемодинамики малого круга.

Аминазин у звериных дает нейролептический эффект (расслабление скелетной мускулатуры, понижение реакций на наружные раздражения, болевой и тактильной чувствительности, сон). Но, как и у человека, у большинства экспериментальных звериных опосля введения аминазина развиваются тахикардия и артериальная гипотония. Продукт употребляют для премедикации у разных звериных — кошек, собак, свиней, травоядных, при этом крайние более чувствительны к нему. Седативный эффект аминазина усиливается при комбинировании с антигистаминными продуктами. Но отрицательное воздействие на гемодинамику ограничивает внедрение аминазина, в особенности у ослабленных, истощенных и старенькых звериных.

Диазепам в крайние годы отыскал применение как для премедикации, так и для вводной анестезии у собак. Внутривенное введение 5—10 мг продукта сопровождается понижением артериального давления (не наиболее 15% от начального) при фактически неизмененных частоте сердечных сокращений, минутном и ударном размерах сердца [Бунятян А.А. и др., 1983]. В ряде всевозможных случаев опосля внутривенного введения диазепама можно произвести интубацию трахеи без доп введения барбитуратов и миорелаксантов [Гиммельфарб Г Н 1984].

В экспериментальной анестезиологии для индукции в анестезию разных звериных обширно употребляют производные барбитуровой кислоты. Плюсы и недочеты этих препаратов, выявленные при клинических исследовательских работах, свойственны и при использовании в опыте.

употребляют как у маленьких звериных (внутримышечно, интраперитонеально, внутрибрюшинно), так и у больших (как правило, внутривенно). У собак обычно употребляют 6,5—7% раствор пен-тобарбитала. В качестве растворителя используют смесь изотонического раствора натрия хлорида (стабилизатор) и пропиленгликоля в количестве ‘/ю размера изотонического раствора натрия хлорида. Таковая методика дает возможность приготовить заблаговременно огромное количество раствора и хранить его в холодильнике. Внутривенно раствор вводят медлительно. Звериное засыпает через 1—2 мин. Анестезия длится долгое время. В редчайших вариантах требуется повторное введение продукта (5—10 мг/кг). Полное просыпание наступает через 24—26 ч. При пробуждении бывает рвота .

Фенобарбитал употребляют в ряде всевозможных случаев для обезболивания маленьких звериных. Продукт вводят в виде раствора интраперитонеально в дозе 45— 50 мг/кг либо внутривенно в дозе 30—35 мг/кг. Продолжительность анестезии может достигать 8 ч.

и гексенал употребляют для премедикации, вводной анестезии, также в ряде всевозможных случаев для поддержания анестезии. Маленьким млекопитающим их можно вводить интраперитонеально и внутривенно, большим, как правило, внутривенно. У собак вероятны премедикация и индукция в анестезию методом внутримышечного введения 400—1000 мг тиопентал-натрия. Почаще препараты употребляют в виде 1—2,5% раствора, вводимого внутривенно. Звериное засыпает через 1—2 мин. Длительность анестезии 20—45 мин. Описана индукция в анестезию методом введения 2,5% раствора гексенала внутри-плеврально либо внутрилегочно [Гиммельфарб Г.Н., 1984]. Наркотический эффект при всем этом достигается практически одномоментно, но резко выражена совокупность симптомов с общим патогенезом) Характеризуется состояниями заторможенности психологической деятель и аффективной сниженности Последней степенью депрессивного синдрома является депрессивный ступор когда на сто процентов отсутствуют дв дыхания. Долгая внутривенная анестезия при помощи капельной инфу-зии 2,5% раствора 1-го из препаратов на техническом уровне ординарна и эффективна. Но размеренный уровень анестезии можно поддержать, лишь имея достаточный опыт работы с этими общими анестетиками. При повторных введениях препаратов период выхода звериных из состояния анестезии удлиняется. Во всех вариантах внедрения тиопентал-натрия либо гексенала у больших млекопитающих нужно предугадать возможность интубации трахеи и ИВЛ.

Натрия оксибутират и пропанидид используют для общей анестезии звериных относительно изредка. Вероятна индукция в анестезию методом внутривенного введения их кошкам, собакам, свиньям. Наркотическое состояние развивается относительно медлительно, потому целенаправлено сочетание нареченных препаратов с анальгетиками либо атарактиками (пропанидид и фентанил, натрия оксибутират и диазепам).

Кетамин в истинное время отыскал обширное распространение для обезболивания экспериментальных звериных. Начало кетаминовой анестезии у мышей и крыс сопровождается краткосрочным понижением артериального давления, которое потом сменяется подъемом. Частота сердечных сокращений возрастает. Существенных конфигураций дыхания у этих видов звериных не происходит [Severe Т., Bloggy С., 1973J. сон; при всем этом существенных сдвигов дыхания и кровообращения не происходит. Внутривенное введение при индукции в анестезию у собак сопровождается сохранением спонтанного дыхания, увеличением частоты сердечных сокращений, умеренным повышением сердечного выброса и артериального давления, неким подъемом давления в легочной артерии . Но для интубации трахеи нужно введение деполяризующих миорелаксантов, потому что сохраняются отражённый; сущ. отражение — простая безотчетная реакция организма на раздражение»> отражённый; сущ. отражение — простейшая бессознательная реакция организма на раздражение»>рефлексы горла и надгортанника [Гиммельфарб Г.Н., 1984]. Гемодинамический эффект кетамина понижается при сочетанием использовании его с диазепамом. Опосля внутримышечного введения довольно действенная анестезия продолжается 25—30 мин. Поддержание общей анестезии может быть при помощи дробного внутривенного введения маленьких доз (2—3 мг/кг). В крайние годы кетамин находит все наиболее обширное применение для анестезиологического обеспечения тестов на больших звериных (телята, свиньи, лошадки и др.). Апробировано его эпидуральное введение у лабораторных звериных [Сачков В.И. и др., 1986].

Этомидат апробирован для общей анестезии у мышей [Gomwolk N., Healing Т., 1981]. Его можно вводить внутривенно либо внутрибрюшинно в растворе пропиленгликоля (2 мг на 1 мл раствора).

Альтезин удачно употребляют для общей анестезии у маленьких и средних лабораторных звериных [Davis В., 1976; Bailey С. et al., 1977]. Альтезин не оказывает существенного воздействия на артериальное давление, но может уменьшать частоту пульса у крыс. В организме мышей и зайчиков он подвергается резвому метаболизму, при повторных введениях не вызывает кумуляции.

Рациональное внедрение миорелаксантов в экспериментальной анестезиологии представляет собой довольно сложную задачку. По сопоставлению с человеком звериные существенно наиболее чувствительны к сиим продуктам. При внедрении миорелаксантов звериным наиболее выражена ганглионарная блокада, происходит значимый выброс гистамина. Их внедрение целенаправлено и оправдано при многокомпонентной общей анестезии, т.е. тогда, когда нужна к примеру, интубация трахеи у собак опосля введения деполяризующего миоре-лаксанта без анестезии сопровождается выраженными гемодинамическими сдвигами [Гиммельфарб Г.Н., 1984].

употребляют для интубации трахеи у различных звериных. При всем этом дозы, как правило, в 10 раз меньше, чем у человека. нужно учесть, что введение дитилина либо подобных препаратов (листенон, мио-релаксин, сукцинилхолин) даже в дозе 0,1 мг/кг может вызвать у собак пролонгированную релаксацию.

Тубокурарина хлорид используют в ряде всевозможных случаев для обездвижи-вания маленьких (крысы) и больших (свиньи) лабораторных звериных. Вводится внутривенно, при этом дозы у крыс соответствуют применяемым в медицинской практике, а у свиней существенно выше [Сондоре А.А., 1978].

У разных звериных можно применять недеполяризующий миорелаксант диплацин. Для собак, кошек и зайчиков рекомендуемая доза составляет 0,25—0,3 мг/кг [Мозгов И. Е., 1979].

Понятно, что по сопоставлению с иными миорелаксантами у звериных наименее выраженный ганглиоблокирующий и гистаминлибераторный эффект дает . Тем не наименее, в особенности в приобретенных опытах, недеполяризующие миорелаксанты применять не следует В частости, у собак они вызывают очень долгое апноэ. Подразумевают, что это явление соединено с холинэстеразопенией [Гиммельфарб Г.Н., 1984].

В экспериментальной анестезиологии употребляют большенный набор водянистых (хлороформ, эфир, фторотан, метоксифлуран, энфлуран, изофлуран) и газообразных (закись азота, циклопропан) ингаляционных анестетиков. совместно с тем значимость этих препаратов у лабораторных звериных разных видов в истинное время значительно пересмотрена. Все пореже употребляют ингаляционную моноанестезию. Клиническая картина таковой общей анестезии у разных звериных сходна и, как правило, сопровождается томными нарушениями актуально принципиальных функций организма, в особенности во время индукции [Мозгов И. Е., 1979]. В опытах на маленьких и средних лабораторных звериных внедрение ингаляционных анестетиков затруднено в связи с отсутствием особых испарителей и дозиметров.

Хлороформ используют для вводной и базовой анестезии у мышей, крыс, морских свинок, сурков, хомячков. Звериных помещают под стеклянный колокол, где находится вата, смоченная анестетиком. естественно, в таковых критериях четкое дозирование нереально и летальность звериных быть может высока. До недавнешнего времени хлороформ довольно обширно употребляли в ветеринарной практике [Мозгов И. Е., 1979]. Установлено, что свиньи относительно отлично переносят анестезию хлороформом в отличие от собак и лошадок. У собак в.1 стадии анестезии вероятна погибель вследствие рефлекторной остановки сердца и дыхания. Описана методика поддержания общей анестезии у собак при помощи 1,2—1,5 о.% хлороформа при газовом потоке 6 л/мин (4 л закиси азота и 2 л кислорода), обеспечивающая адекватную защиту организма звериных от значимой операционной травмы [Гиммельфарб Г.Н., 1984]. Тем не наименее хлороформ очень токсичен как для звериных, так и для экспериментатора. Его внедрение обязано быть строго ограниченным. Эфир для наркоза наименее токсичен, чем хлороформ, оказывает наиболее обширное терапевтическое действие. У маленьких лабораторных звериных употребляется аналогично иным ингаляционным анестетикам. У собак быть может использован для индукции в анестезию (5—6 о.% в потоке закиси азота с кислородом в соотношении 2:1). При всем этом остается довольно выраженной стадия возбуждения, вероятны гипертензия, тахикардия, разные аритмии. Для поддержания анестезии нужно 2—4 о.% эфира в потоке закиси азота с кислородом. При использовании анальгетиков, гипнотиков, атарактиков можно понизить концентрацию эфира до 0,5—2 о.%. Тем не наименее диэтиловый эфир все пореже употребляют для анестезии из-за раздражения дыхательных путей, взрывоопасности, невозможности использовать диатермокоагуляцию.

Циклопропан владеет лишь одним преимуществом — резвым введением в анестезию и выходом из нее. Продукт дорог, взрывоопасен, применение его просит специального оборудования. Как и у человека, он вызывает сенсибилизацию миокарда к катехоламинам. Эти свойства резко ограничивают внедрение циклопропана в опытах на звериных.

Метоксифлуран, используемый в экспериментальной анестезиологии, владеет недочетов, основной из которых — неспешное введение в анестезию и выход из нее. методика внедрения подобна такой диэтилового эфира. Главные достоинства при использовании у лабораторных звериных: взрывобезопасность, отсутствие раздражающего деяния на дыхательные пути и гиперсаливации, возможность поддержания неизменного уровня анестезии без интубации и ИВЛ. совместно с тем у кошек метоксифлуран (1 о.%) в газовой консистенции значительно понижает воздействие ауторегуляторных симпатических устройств поддержания сосудистого тонуса, в связи с чем вероятны ненужные гемодинамические реакции [Jrestedt L., 1975].

Фторотан является всераспространенным продуктам для ингаляционной анестезии у лабораторных звериных, но при использовании его нужно иметь отлично откалиброванный и четкий испаритель. Установлены рациональные дозы фторотана для разных звериных. Для ингаляционной общей анестезии у крыс нужно 2—3 о.% фторотана в потоке консистенции закиси азота с кислородом в соотношении от 1:1 до 3:1. Для индукции в анестезию собак и свиней нужно 2—3 о.% продукта, подаваемого через специальную маску. Для поддержания анестезии довольно 1 о.%. При анестезии у больших звериных доза анестетика обязана быть в 1,5—2 раза выше, но при всем этом может усиливаться отрицательное воздействие, которое аналогично наблюдаемому в медицинской анестезиологии (понижение артериального давления, брадикар-дия, уменьшение сердечного выброса).

Закись азота у лабораторных звериных наименее эффективна по сопоставлению с человеком и приматами. При использовании закиси азота в качестве единственного анестетика весьма тяжело достигнуть нужной глубины анестезии, если ее концентрация во вдыхаемой консистенции наименее 85%, а такие концентрации небезопасны. Но положительные характеристики закиси азота появляются при сочетании ее с иными, наиболее сильными ингаляционными анестетиками, к примеру фторотаном, либо анальгетиками.

Для общей анестезии употребляют и некие остальные неингаляционные (хлоралоза, уретан, аллобарбитал, дипидолор) и ингаляционные анестетики (трихлорэтилен, энфлуран, изофлуран) [Гиммельфарб Г.Н., 1984; Holland А., 1973; Folle I., Levensone R., 1976; Green M., 1976; Blitt С. et al., 1979]. При анестезиологическом обеспечении тестов на звериных довольно обширно употребляют также антигистаминные препараты (димедрол, супрастин). Они дают умеренный седативный и гипнотический эффект, усиливают действие анальгетиков и атарактиков. У собак для премедикации в сочетании с фентанилом и дроперидолом довольно эффективна доза димедрола 2—3 мг/кг внутримышечно. Телятам и овцам продукт можно вводить подкожно в количестве 0,3 мл/кг.

Перечень литературы

Атаралгезия.— Будапешт: медицина, 1983. 171 с.

Воздействие анестезии и искусственного кровообращения на метаболизм гистамина и серотонина в опыте // Мед. жури. Узбекистана. 1983. -№ 4. — С. 32—35.

Анестезия у экспериментальных звериных. Ташкент: ФАН, 1984. 144 с.

Фармакология.— М.: Колос, 1979.—416 с.

и др. Эиидуральная аналгезия кетамином в опыте//Анест. и реаниматол. 1986. № 4.- С. 7—12.

., . Myocardial depression by ketamine // Anesthesia. 1981.—Vol. 35. — P. 366-370.

ct al. Effect of vecuronium on intracranial pressure, mean arterial pressure and heart rate in cats // Brit. J. Anaesth. 1986. Vol. 58, N 54. P. 441 — 443.

Ftomidate: a valuable anesthetic for // Lab Animals 1981 Vol 15 P. 151 152

С Isoflnrane, halotane and regional cerebral blood flow at various levels of PaCO, in rabbits // Anesthesiology. 1986. Vol. 64, N 5. P 598 604.

The influence of nitrons oxide on nietionme, S-adcnosyemethionine and othe ammo acids//Anesthesiologv. 1986. Vol. 64, N 4. P. 490 495.

et al. The effect ol cemetidine on aneslhelic metabolism and toxity // Anaest. Analg/ — 1986. — Vol. 65, — P. 481-488.

]]>