Учебная работа. Внутренняя среда организма. Кровь, основные функции, физиологическое значение

Транспорт — благодаря наличию гидрофильных и гидрофобных участков, белки способны связываться с молекулами и жироподобными субстанциями и производить их перенос по руслу крови (внутренней средой организма человека и животных). Не считая белка плазмы (БП) связывают 2/3 кальция плазмы переводя его в недиффуидируемую форму.

Создание коллоидно-осмотического давления (онкотическое) меж плазмой и межклеточной жидкостью создается градиент концентрации белков.

Онкотическое давление плазмы — 25 мм рт. ст. (3,3 кПа)

Онкотическое давление межклеточной воды — 5 мм рт.ст. (0,7 кПа) (Разница 20 мм рт.ст.).

На сдвиги онкотического давления значительно влияет содержание альбумина.

Понижение концентрации альбумина приводит к задержке Н2О в межклеточном пространстве (интерстициальный отек (избыточное накопление жидкости в органах)).

Искусственные кровезаменители должны владеть таковым же онкотическим давлением как и плазма крови (внутренней средой организма человека и животных).

Буферная функция — поддерживает всепостоянство рН крови (внутренней средой организма человека и животных) методом связывания Н+ либо ОН-.

Предупреждение кровопотери обосновано наличием в плазме крови (внутренней средой организма человека и животных) фибриногена. Цепь реакций (причин), в каких участвуют белки плазмы завершается перевоплощением растворенного в плазме фибриногена в сеть из молекул Фибрина, образующую сгусток (тромб).

характеристики и функции отдельных белковых факций

Альбумин плазмы — этот белок описывает на 80% коллоидно-осмотическое (онкотическое) давление плазмы. 60% общего белка плазмы приходится на долю альбумина (35-45 г/л).

Альбумин пикомолекулярное соединение и потому отлично подступает для выполнения функции переносчиков почти всех транспортируемых кровью (внутренней средой организма) веществ.

Альбумин связывает: биллирубин, уробилин, жирные кислоты, соли желчных кислот, пенициллин, сульфамедин, ртуть.

При воспалительных действиях и поражении печени и почек количество альбумина понижается.

Глобулины

1 — глобулины, по другому их именуют — гликопротеинами 2/3 всего количества глюкозы плазмы находится в связанной форме в составе гликопротеинов. К субфикции гликопротеинов относится группа углеводосодержащих белков — протеогликаны (мукопротеины).

2 — глобулины — это протеогликан либо по другому медьсодержащий белок церулоплазмин, который связывает 90% всей меди, содержащейся в плазме.

-глобулин — это белковые переносчики липидов и полисахаридов. Принципиальное кровью (внутренней средой организма).

— глобулины. Это неоднородная группа белков выполняющих защитные и обезвреживающие функции, по другому именуемые иммуноглобулинами. размеры и состав — глобулинов значительно варьирует. При всех заболеваниях, в особенности воспалительных, содержание — глобулинов в плазме увеличивается. К — глобулинам относятся агглютинины крови (внутренней средой организма человека и животных): Анти-А и Анти-В.

Фибриноген — растворимый предшественник фибрина, крайний преобразуется в нерастворимую форму. Молекула фибрина имеет удлиненную форму (соотношение длины ширина — 17:1)). Высочайшая вязкость смесей фибриногена обоснована свойством его молекул создавать сгустки в виде «нитей бус».

Эритроциты

Осмотическая стойкость эритроцитов:

малая 0,48—0,46%

наибольшая 0,34—0,32%

Средний размер эритроцита 76—96 мк3

Среднее содержание гемоглобина в 1 эритроците 27—33,3 пг 0,42—0,52 ммоль/эритр

Средняя концентрация гемоглобина в 1 эритроците 30—38% 4,65—5,89 ммоль/эритр

Поперечник эритроцита 5—6,9 мкм — 12,5%

7—8 мкм — 75%

8,1—9 мкм— 12,5%

Фагоцитоз — поглощение чужеродных частиц либо клеток и предстоящее их ликвидирование клеточками крови (внутренней средой организма человека и животных).

Стадии фагоцитоза:

1. приближение фагоцита к объекту (лиганду);

2. контакт лигонда с мембраной фагоцита;

3. поглощение лигонда;

4. переваривание либо ликвидирование фагоцитарного объекта.

действие лейкоцитов проявляется в присутствии особенных соединений — хемоаттрактантов (продукты распада тканей, иммуноглобулины, фрагменты активных компонент комплемента, простагландины, лейкотриены, лимфокины и монокины). Контакт фагоцита опосредуется особенными соединениями — опсонинами, усиливающими фагоцитоз. Более известные опсонины: иммунные комплексы, фрагменты системы комплемента, С-реактивный белок, агрегированные белки, фибронектины и др.

В процессе фагоцитоза лиганд оказывается заключенным в мембрану фагоцита — появляется фагосома. Потом происходит ее слияние с лизосомами клеточки и появляется фаголизосома.

Завершенный фагоцитоз — процесс, когда фагоцитируемый объект гибнет, разрушается.

Незавершенный фагоцитоз — фагоцитируемый объект может жить и развиваться в фагоците.

Иммунитет — комплекс реакций, направленных на поддержание гомеостаза при встрече с чужеродными агентами экзогенного либо эндогенного происхождения.

антигены способны сформировывать специфичный иммунный ответ благодаря наличию детерминант. К ним, как ключ к замку, подступают активные центры образующих кожи и др.

2. регуляторными: Т- и В-хелперы, супрессоры, Т-лимфоциты памяти.

3. эффекторы иммунного ответа: Т- и В-киллеры и В-лимфоциты антителопродуценты.

нужно уметь:

1. Научиться технике взятия крови (внутренней средой организма человека и животных) из пальца человека для лабораторного анализа.

2. Ознакомится с принципом и методикой подсчета эритроцитов. Подсчитать их количество в крови (внутренней средой организма человека и животных).

3. Ознакомится с принципом и методикой подсчета лейкоцитов. Подсчитать их количество в крови (внутренней средой организма человека и животных) у 1-го из студентов.

4. Ознакомиться с колориметрической методикой определения количества гемоглобина по способу Сали и найти его количество в крови (внутренней средой организма человека и животных)

5. Ознакомиться со качествами осмотической стойкости эритроцитов и произвести количественную оценку их резистентности по отношению к гипотоническим растворам.

Работа №1. техника взятия крови (внутренней средой организма человека и животных)

Цель работы: обучить студентов технике взятия крови (внутренней средой организма человека и животных) из пальца человека для лабораторного анализа.

Нужно для работы: испытуемый, стерильные копья-скарификаторы однократного использования и пинцет, спирт, йод, вата, капилляр Сали и малая груша, стаканчик стеклянный (либо чашечка Петри) для собирания использованной ваты и копий, отдельный набор для промывания и просушивания капилляра, вода, эфир, резиновая трубка с малеханькой грушей, большая груша для воздуха.

Проведение работы:

До этого чем приступить к забору крови (внутренней средой организма человека и животных), следует верно представить для каких целей нужна руки и подождать, пока поверхность кожи просохнет. Приступить к забору крови (внутренней средой организма человека и животных) лишь опосля собеседования с педагогом и под его контролем!

2. Положить предплечье левой руки пациента на стол, ладонью ввысь. Достать стерильным пинцетом из стерилизатора продезинфицированное копье-скарификатор, взять его в правую руку, а левой бездвижно держать палец исследуемого, слегка сжимая с боковых поверхностей приготовленную фалангу.

3. Укол нанести одним обрывочным движением на 3-4 мм дистальнее центра подушки пальца. нужно, чтоб краешек копья не попросту поцарапал кожу, а вошел в мякоть фаланги до ограничения.

4. Первую выступившую каплю крови (внутренней средой организма человека и животных) стереть сухой ватой (для анализа не употреблять), потом приступить к забору крови (внутренней средой организма человека и животных) для работы.

5. Выделение крови (внутренней средой организма человека и животных) можно усилить легким массажем (но не сдавливанием) боковых поверхностей пальца в сторону концевой фаланги, также временами сжимая и разжимая опущенную вниз кисть. Если для анализа требуется не одна капля крови (внутренней средой организма человека и животных), а больше, то опосля взятия каждой последующей капли нужно насухо вытирать палец и лишь опосля этого брать новейшую каплю. необходимо смотреть за тем, чтоб тканью. Состоит из плазмы и форменных элементов: клеток лейкоцитов и постклеточных структур: эритроцитов и тромбоцитов) не разливалась по пальцу (чтоб на пальце не начался процесс свертывания крови (внутренней средой организма человека и животных)).

6. Набрать 20 мм3 (0,02 мл) крови (внутренней средой организма человека и животных) в капилляр от гемометра Сали.

Для этого нужно:

Ш взять в правую руку незапятнанный и сухой капилляр Сали с насаженой на конец резиновой трубкой и малеханькой грушей. Капилляр задерживать указательным, средним и огромным пальцами в чуток наклонном положении. Грушу поместить в ладонь и мизинцем либо безымянным пальцем слегка на нее надавить;

Ш погрузив краешек капилляра в каплю крови (внутренней средой организма человека и животных) (но, не прижимая отверстие к пальцу), начать медлительно и весьма аккуратненько уменьшать нажатие на грушу. При всем этом столбик крови (внутренней средой организма человека и животных) заполнит капилляр. Набрать образованная жидкой соединительной тканью. Состоит из плазмы и форменных элементов: клеток лейкоцитов и постклеточных структур: эритроцитов и тромбоцитов»>кровь

(внутренняя среда организма, образованная жидкой соединительной тканью. Состоит из плазмы и форменных элементов: клеток лейкоцитов и постклеточных структур: эритроцитов и тромбоцитов) до метки 20 мм3;

Ш капилляр снаружи вытереть сухой ватой. Если крови (внутренней средой организма человека и животных) набралось незначительно больше, ее можно снять сухой ватой, которую прикладываю к кончику горизонтально размещенного капилляра (на грушу не жать!) Отмеренное количество крови (внутренней средой организма человека и животных) взять для соответственного анализа.

7. Стереть ватой остатки крови (внутренней средой организма человека и животных) с пальца, смазать пространство укола йодом либо приложить ватку, смоченную спиртом, и придавить краешек пальца к ладошки.

8. Использованные вату и скарификаторы не разбрасывать по столу, а сложить в особый стакан либо чашечку Петри и в конце работы выкинуть. Убрать десктоп.

9. Использованный капилляр Сали помыть водой, просушить спиртом, эфиром и воздушной струей.

10. В протоколе коротко обрисовать главные требования и правила, которые необходимо соблюдать при взятии крови (внутренней средой организма человека и животных) из пальца.

Работа №2. Подсчет количества эритроцитов

Цель работы: ознакомится с принципом и методикой подсчета эритроцитов. Подсчитать их количество в крови (внутренней средой организма человека и животных) 1-го из студентов.

нужно для работы: испытуемый, микроскоп с окуляром х 15, счетная камера Горяева, шлифованное покровное стекло, штатив с незапятанной и сухой пробирками (либо особые смесители для подсчета эритроцитов), бюретка либо мерный цилиндр на 5-10 мл, капилляр Сали с резинкой и малеханькой грушей, стеклянная палочка, стерильные скарификаторы и пинцет, спирт, йод, вата, 3% р-р хлористого натрия.

Проведение работы:

1. Ознакомиться с устройством смесителя (меланжера) (рис.1). В истинное время кровь (внутренняя среда организма, образованная жидкой соединительной тканью. Состоит из плазмы и форменных элементов: клеток лейкоцитов и постклеточных структур: эритроцитов и тромбоцитов) для подсчета форменных частей крови (внутренней средой организма человека и животных) разводят не в смесителях, а в пробирках (минзурочный способ разведения по Николаеву).

2. образованная жидкой соединительной тканью. Состоит из плазмы и форменных элементов: клеток лейкоцитов и постклеточных структур: эритроцитов и тромбоцитов»>кровь (внутренняя среда организма, образованная жидкой соединительной тканью. Состоит из плазмы и форменных элементов: клеток лейкоцитов и постклеточных структур: эритроцитов и тромбоцитов) для подсчета эритроцитов набрать в смеситель до метки 0,5 (либо 1) и сюда же добавить раствор хлористого натрия до отметки 101. образованная водянистой соединительной тканью (Совокупность различных и взаимодействующих тканей образуют органы). Состоит из плазмы и форменных частей: клеток лейкоцитов и постклеточных структур: эритроцитов и тромбоцитов»> образованная жидкой соединительной тканью. Состоит из плазмы и форменных элементов: клеток лейкоцитов и постклеточных структур: эритроцитов и тромбоцитов»>кровь (внутренняя среда организма, образованная жидкой соединительной тканью. Состоит из плазмы и форменных элементов: клеток лейкоцитов и постклеточных структур: эритроцитов и тромбоцитов) разводится в 200 раз. (техника забора крови (внутренней средой организма человека и животных) описана в работе №1).

3. При минзурочном разведении крови (внутренней средой организма человека и животных) в чистую и сухую пробирку буквально отмерить 4 мл хлористого натрия (512 мм/л). При помощи капилляра Сали набрать 20 мм3 крови (внутренней средой организма человека и животных) и осторожно опустить ее на дно пробирки. Помыть сиим же веществом (из верхнего слоя) капилляр и слегка встряхивая пробирку, кропотливо перемешать содержимое.

4. Разглядеть под микроскопом сетку счетной камеры Горяева (см. рис. 1).

5. Осторожно притереть покровное стекло к узеньким боковым пластинам камеры Горяева до возникновения колец Ньютона.

6. Заполнить камеру. Для этого из смесителя две-три капли крови (внутренней средой организма человека и животных) следует выпустить на ватку, а потом заполнить камеру: краешек смесителя поднести к краю притертого покровного стекла — в силу закона капиллярности камера заполнится. Наполнение из пробирки: пробирку с разведенной кровью (внутренней средой организма) пару раз встряхнуть, держа вертикально для равномерного перемешивания, сходу же опосля этого концом стеклянной палочки либо капилляра Сали (не пользуясь грушей) перенести каплю консистенции на сетку счетной камеры Горяева. Для этого краешек палочки либо капилляра следует поднести к краю притертого покровного стекла. нужно смотреть за тем, чтоб под покровным стеклом не образовались пузырьки воздуха.

Рис. 1. Подсчет частей крови (внутренней средой организма человека и животных): а — скарификатор; б — меланжеры; в — фрагмент сетки счетной камеры Горяева; г — схема подсчета эритроцитов (правило Егорова)

Через две-три минутки поместить камеру под микроскоп и сосчитать эритроциты (при окуляре микроскопа х 15 можно считать под малым повышением).

7. техника подсчета. Эритроциты подсчитывают в 5 огромных квадратах расположенных на искосок сетки счетной камеры Горяева, любой из которых разбит на 16 малеханьких квадратиков (всего их 80). Форменные элементы в квадратиках подсчитывают по правилу Егорова (см.рис. 1,г):

· из эритроцитов, лежащих на границах, относить к данному квадратику лишь те, которые лежат на верхней и левой границах;

· порядок просмотра малеханьких квадратиков в большенном — по зигзагу.

8. Записать результаты подсчета в любом квадратике и просуммировать число эритроцитов.

9. Высчитать количество эритроцитов в 1 мкл крови (внутренней средой организма человека и животных) при ее разбавлении в 200 раз по последующей формуле: Сэх200 х 4000, где Сэ — сумма

подсчитанных эритроцитов 80

10. В протоколе коротко обрисовать ход работы, внести приобретенные данные и создать выводы (соответствие физиологической норме).

Работа №3. Подсчет количества лейкоцитов

Цель работы: познакомится с принципом и методикой подсчета лейкоцитов. Подсчитать их количество в крови (внутренней средой организма человека и животных) у 1-го из студентов.

нужно для работы: испытуемый, микроскоп с окуляром 10 либо15, счетная камера Горяева, шлифованное покровное стекло, штатив с малеханькой пробиркой, бюретка либо мерный цилиндр на 3-5 мл с делениями в толиках мм, капилляр Сали с резиновой трубкой и малеханькой грушей, смеситель для лейкоцитов, стеклянная палочка, стерильные скарификатор и пинцет, спирт, йод, вата, 5%-ный р-р уксусной кислоты, окрашенный метиленовым голубым.

Проведение работы:

1. образованная водянистой соединительной тканью (Совокупность различных и взаимодействующих тканей образуют органы). Состоит из плазмы и форменных частей: клеток лейкоцитов и постклеточных структур: эритроцитов и тромбоцитов»> образованная жидкой соединительной тканью. Состоит из плазмы и форменных элементов: клеток лейкоцитов и постклеточных структур: эритроцитов и тромбоцитов»>кровь (внутренняя среда организма, образованная жидкой соединительной тканью. Состоит из плазмы и форменных элементов: клеток лейкоцитов и постклеточных структур: эритроцитов и тромбоцитов) из пальца набрать в смеситель до метки 0,5 и сюда же добавить р-р уксусной кислоты до метки 11. Зажав 2-мя пальцами отверстия, меланжер кропотливо встряхнуть.

2. При минзурочном разведении в чистую и сухую пробирку буквально отмерить 0,4 мл р-ра уксусной кислоты. Набрать при помощи капилляра Сали 20 мм3 крови (внутренней средой организма человека и животных) и осторожно выпустить ее на дно пробирки. Помыть сиим же веществом из верхнего слоя капилляр и, осторожно встряхнуть пробирку, кропотливо перемешать содержимое. Приобретенное разведение 1:21 можно принять за 1:20.

3. Дальше, провести опыты как описано в пп.5-8 работы №2

4. Техника подсчета. Сосчитать количество лейкоцитов в 25 огромных квадратах под малым повышением, пользуясь правилом Егорова.

5. Высчитать количество лейкоцитов при разбавлении крови (внутренней средой организма человека и животных) в 20 раз по формуле:

Л=Слх20 х 4000 : 400, где Сл — сумма подсчитанных лейкоцитов.

6. В протоколе коротко обрисовать ход работы, внести приобретенные данные и создать выводы (соответствие физиологической норме).

Работа №4. Определение количества гемоглобина

Цель работы: ознакомиться с колориметрической методикой определения количества гемоглобина по способу Сали и найти его количество в крови (внутренней средой организма человека и животных) у 1-го из студентов..

нужно для работы: испытуемый, гемометр Сали, стерильные скарификатор и пинцет, спирт, йод, вата, 0,1 N р-р соляной кислоты, дистиллированная вода.

Проведение работы:

1. Набрать в градуированную пробирку гемометра Сали 0,2 мл (до нижнего радиального кольца) децинормального раствора соляной кислоты. Кислоту набирать обыкновенной пипеткой, имеющейся в приборе (рис.2)

2. Проколоть палец и набрать капилляром Сали 20 мм3 крови (внутренней средой организма человека и животных).

3. тканью. Состоит из плазмы и форменных элементов: клеток лейкоцитов и постклеточных структур: эритроцитов и тромбоцитов) лучше взять у такого же студента, у которого определяли количество эритроцитов.

4. Погрузив краешек капилляра в раствор HCl, выпустить образованная водянистой соединительной тканью (Совокупность различных и взаимодействующих тканей образуют органы). Состоит из плазмы и форменных частей: клеток лейкоцитов и постклеточных структур: эритроцитов и тромбоцитов»> образованная жидкой соединительной тканью. Состоит из плазмы и форменных элементов: клеток лейкоцитов и постклеточных структур: эритроцитов и тромбоцитов»>кровь (внутренняя среда организма, образованная жидкой соединительной тканью. Состоит из плазмы и форменных элементов: клеток лейкоцитов и постклеточных структур: эритроцитов и тромбоцитов) на дно градуированной пробирки под кислоту, а из верхнего слоя раствора помыть два-три раза капилляр (смотреть за тем, чтоб не образовалась пена).

5. Встряхивая пробирку легкими ударами пальца по ее дну, стремительно перемешать содержимое, чтоб предупредить образование сгустка на деньке.

6. Вставить градуированную пробирку в корпус гемометра, бросить на 5 минут до полного гемолиза и образования соляного гематина (темно-коричневый цвет).

7. Пипеткой добавлять по каплям дистиллированную воду до сглаживания цвета приобретенной консистенции с цветом обычных смесей. Всякий раз опосля прибавления воды содержимое пробирки кропотливо размешивать стеклянной палочкой. Ассоциировать цвета следует в проходящем дневном свете, держа гемометр в вытянутой руке.

8. Найти количество гемоглобина в исследуемой крови (внутренней средой организма человека и животных) в г% по свидетельствам шкалы градуированной пробирки на уровне нижнего мениска окрашенного раствора.

9. Высчитать количество гемоглобина в относительных единицах Сали. Пересчет произвести с учетом того, что в обычном растворе 166,7 г/л (16,67%) гемоглобина соответствуют отн. ед. Сали.

10. В протоколах коротко обрисовать ход работы, внести приобретенные результаты и создать выводы о согласовании физиологической норме.

Рис. 2. Схема гемометра Сали: 1 — пробирки со обычным веществом хлорида гематина; 2 — пробирка для определения количества гемоглобина; 3 — пипетка для крови (внутренней средой организма человека и животных); 4 — пипетка для воды; 5 — палочка для размешивания.

Работа №5. Определение осмотической резистентности эритроцитов

Цель работы: ознакомиться со качествами осмотической стойкости эритроцитов и произвести количественную оценку их резистентности по отношению к гипотоническим растворам.

нужно для работы: восемь незапятнанных и сухих пробирок, штатив, мерный цилиндр на 5-10 мл, 1%-ный раствор хлористого натрия, дистиллированная вода, стерильные скарификаторы и пинцет, спирт, йод, вата, стеклянные палочки, мерные пипетки.

Проведение работы:

1. В каждую из пробирок налить 1%-ный раствор хлористого натрия в убывающем количестве от 0,6 до 0,15 мл, потом в каждую пробирку добавить дистиллированной воды до 1 мл. Пробирки пронумеровать.

2. Во все пробирки добавить при помощи капилляра Сали по капле крови (внутренней средой организма человека и животных). Добавление крови (внутренней средой организма человека и животных) лучше начинать с пробирки, в которую помещен раствор с меньшей концентрацией, и идти в сторону роста. Осторожно перемешать содержимое, чтоб не образовались пузырьки воздуха.

3. Бросить пробирки в штативе на отлично освещенном месте на 30-40 мин, опосля чего же разглядеть их содержимое (не взбалтывать!). Проанализировать результаты.

4. О границах (уровне) осмотической резистентности эритроцитов судить по степени гемолиза крови (внутренней средой организма человека и животных) в разных гипотонических смесях.

5. Результаты наблюдений занести в таблицу:

Концентрация смесей (%)

Результаты наблюдений

выводы

цвет верхнего прозрачного

Вид остальной части раствора

осадок

степень гемолиза

Уровень резистентности

0,60

0,55

0,50

0,45

0,40

0,35

0,30

0,25

И т.д.

6. Отметить пробирки, в каких:

· отсутствует гемолиз;

· частичный гемолиз;

· полный гемолиз.

7. В выводах отдать определение верхней и нижней границ резистентности эритроцитов и создать заключение о согласовании приобретенных результатов физиологической норме.

Тема 2: Группы крови (внутренней средой организма человека и животных), правила переливания крови (внутренней средой организма человека и животных). Свертывание крови (внутренней средой организма человека и животных). Гемостаз его регуляция

Нужно знать:

1. Группы крови (внутренней средой организма человека и животных), правила переливания крови (внутренней средой организма человека и животных).

2. Резус-фактор. Механизмы формирования резус-конфликтных ситуаций.

3. Система гемостаза. Сосудисто-тромбоцитарный гемостаз.

4. Внутрисосудистая коагуляция. Причины свертывания крови (внутренней средой организма человека и животных). Главные стадии образования тромба фибринового происхождения.

5. Фибринолиз. Наружный и внутренний механизмы фибринолиза.

6. Противосвертывающая система организма, ее физические и хим составляющие.

7. Регуляция свертывания крови (внутренней средой организма человека и животных) и фибринолиза. Взаимодействие свертывающей и противосвёртывающей систем.

8. Лимфа и тканевая жидкость, состав и механизм образования. Циркуляция лимфы в организме, воды в организме.

Главные понятия и определения

Свертывающая система крови (внутренней средой организма человека и животных) — это совокупа причин, участвующих в действиях крови (внутренней средой организма человека и животных). исследование действий свертывания крови (внутренней средой организма человека и животных). Исследование действий свертывания крови (внутренней средой организма человека и животных) имеет практическое значение при переливании крови (внутренней средой организма человека и животных) для сохранения ее в водянистом состоянии, для предупреждения смертельных кровотечений, предотвращения образования тромбов в сосудах и исцеления внутрисосудистых тромбозов.

Противосвертывающая система крови (внутренней средой организма человека и животных) — это совокупа содержащихся в крови (внутренней средой организма человека и животных) веществ, препятствующие образованию кровянистого сгустка и его ретракции.

Группы крови (внутренней средой организма человека и животных)

В эритроцитах, на мембране находятся антитела (агглютиногены) А и В, а в плазме — антитела (агглютинины) б и в. Зависимо от присутствия разных антигенов и антител выделяют 4 группы крови (внутренней средой организма человека и животных). При сочетании одноименных один антиген — Д (резус-фактор), который может находиться в эритроцитах независимо от групповой принадлежности. Антител к данному антигену не существует, но они могут создаваться при иммунизации организма кровью (внутренней средой организма), содержащей резус-фактор (Rh), и в предстоящем при переливании резус-положительной крови (внутренней средой организма человека и животных) иммунизированному реципиенту может произойти агглютинация эритроцитов донорской крови (внутренней средой организма человека и животных).

группа

антигены

антитела

I (0)

—

б, в

II (A)

A

B

III (B)

B

A

IV (AB)

A,B

—

Нужно уметь:

1.Ознакомиться с принципами и методикой определения СОЭ по Панченкову и найти ее у студентов.

2. Рассчитывать цветной показатель крови (внутренней средой организма человека и животных).

3. Определять время свертывания крови (внутренней средой организма человека и животных)

4. Определять длительности кровотечения.

5. Определять группу крови (внутренней средой организма человека и животных) резус- принадлежности крови (внутренней средой организма человека и животных) человека.

Работа №6. Определение скорости оседания эритроцитов

Цель работы: ознакомиться с принципами и методикой определения СОЭ по Панченкову и найти СОЭ у студентов.

нужно для работы: испытуемый, устройство Панченкова, два часовых стекла либо тигелечка, 5%-ный раствор лимоннокислого натрия (цитрат натрия), стерильные скарификаторы и пинцет, спирт, йод, вата.

Проведение работы:

1. Разглядеть капилляр Панченкова (рис. 3), разобрать все его числа и метки (О — на уровне 100 мм; Р- на уровне 50 мм).

2. Налить незначительно цитрата на часовое стекло либо тигелек, помыть им капилляр.

3. Удалить продуванием образовавшиеся в капилляре пузырьки, чтоб предупредить появление воздушных пробок при следующем наборе в капилляр.

4. Отметить сиим же капилляром 50 мм раствора цитрата натрия, набрав его до метки Р, и выпустить на незапятнанное часовое стекло.

5. Проколоть палец и, сняв первую каплю, приступить к взятию крови (внутренней средой организма человека и животных).

6. Взять капилляр в правую руку так, чтоб созидать все деления. Опустить его краешек в каплю крови (внутренней средой организма человека и животных), не прижимая отверстие плотно к пальцу, вольный конец капилляра опустить несколько ниже горизонтального уровня.

7. Стремительно набрать 100 мм крови (внутренней средой организма человека и животных) без пузырьков (до метки К). Растекающиеся капли стереть увлажненной ваткой, смоченной веществом цитрата.

8. Осторожно, не допуская пузырей, выдуть всю порцию крови (внутренней средой организма человека и животных) в отмеренный раствор цитрата и кропотливо перемешать концом капилляра.

9. Вновь помыть капилляр веществом цитрата, снова набрать в него образованная водянистой соединительной тканью (Совокупность различных и взаимодействующих тканей образуют органы). Состоит из плазмы и форменных частей: клеток лейкоцитов и постклеточных структур: эритроцитов и тромбоцитов»>тканью. Состоит из плазмы и форменных элементов: клеток лейкоцитов и постклеточных структур: эритроцитов и тромбоцитов) до метки К и осторожно выдуть на то же стекло.

10. Все отлично перемешать и потом набрать часть получившейся консистенции (без пузырьков воздуха) в капилляр до метки К. Разведение 1:4.

11. несколько ниже горизонтального уровня по отношению к часовому стеклу с разведенной кровью (внутренней средой организма)

12. Зажать указательным пальцем правой руки верхний конец капилляра, повернуть его вертикально и вставить в штатив. Палец можно отпустить лишь опосля того, как вы твердо удостоверились в том, что нижний конец капилляра прижат к резинке на стойке устройства Панченкова.

13. Засечь время установки капилляра в штатив. Штатив с места не сдвигать.

14. Судить о величине СОЭ по высоте столбика плазмы (мм), освободившейся от эритроцитов за один час стояния крови (внутренней средой организма человека и животных) (прозрачный слой).

15. В протоколе коротко обрисовать ход работы, зарисовать капилляр с нанесенными метками. Записать время СОЭ. Сопоставить приобретенные результаты с физиологической нормой.

Рис.3. Система устройства Панченкова. А — вид устройства; Б — капилляр с метками К (крови (внутренней средой организма человека и животных)

Цель работы: научиться рассчитывать цветной показатель крови (внутренней средой организма человека и животных).

Нужно для работы: данные определения содержания гемоглобина в крови (внутренней средой организма человека и животных) и количество в ней эритроцитов (взять из прошлых работ).

Проведение работы:

Для вычисления цветного показателя крови (внутренней средой организма человека и животных) количество гемоглобина, выраженное в относительных процентах (по отношению к эталону, принимаемому за 100%), делят на три 1-ые числа числа эритроцитов, и приобретенное крови (внутренней средой организма человека и животных)) — цветной показатель соответственно равен (100:500)х5=1.

Если цветной показатель меньше единицы, то такое явление именуется — гипохромазией, больше единицы — гиперхромазией.

Высчитать цветной показатель и отдать ему оценку, сопоставить с физиологической нормой.

Работа №8. Определение скорости свертывания крови (внутренней средой организма человека и животных)

Цель работы: научиться определять время свертывания крови (внутренней средой организма человека и животных) по одной из предлагаемых методик.

методика по Сухареву

Нужно для работы: испытуемый, незапятнанный и сухой капилляр от устройства Панченкова, стерильный скарификатор и пинцет, спирт, йод, вата.

Проведение работы:

1. Проколоть палец, снять первую каплю крови (внутренней средой организма человека и животных) сухой ваткой.

2. Опустить конец капилляра в каплю крови (внутренней средой организма человека и животных), не прижимая отверстия к пальцу.

3. Слегка опустив внешний конец капилляра, набрать 20-30 мм крови (внутренней средой организма человека и животных) и перевести этот столбик крови (внутренней средой организма человека и животных) на середину.

4. Держа капилляр 2-мя пальцами, произвести плавное покачивание его в обе стороны с амплитудой 40-450.

Свободное смещение столбика крови (внутренней средой организма человека и животных) гласит о том, что свертывание еще не пришло. Замедленное движение крови (внутренней средой организма человека и животных) при наклоне капилляра охарактеризовывает начало свертывания, при всем этом на внутренней стене капилляра возникают маленькие сгустки.

момент полной остановки движения столбика крови (внутренней средой организма человека и животных) в капилляре соответствует наступлению окончательного свертывания крови (внутренней средой организма человека и животных). По предлагаемой методике скорость свертывания крови (внутренней средой организма человека и животных) в норме: начало свертывания происходи через 30 с — 2 мин., полное свертывание — через 3-5 мин.

методика, измененная Агаджаняном

Нужно для работы: испытуемый, парафинированное часовое стекло (можно предметное стекло, покрытое парафином), стеклянный крючок, стерильный скарификатор и пинцет, спирт, йод, вата.

Проведение работы:

1. Проколоть палец так, чтоб на поверхность кожи выступила капля крови (внутренней средой организма человека и животных).

2. Стеклянной палочкой перенести каплю на парафинированное стекло.

3. Через любые 30 с, погружая стеклянный крючок в каплю крови (внутренней средой организма человека и животных), смотреть за образованием нитей фибрина.

4. Интервал времени меж нанесением капли крови (внутренней средой организма человека и животных) на стекло и возникновением фибриновых нитей принимать за время свертывания.

5. Нужно учитывать, что по данной методике время свертывания в норме составляет около 3-5 мин.

6. В протоколе обрисовать, по какой методике и как определялось время свертывания. Результаты записать и сопоставить с физиологической нормой.

Работа №9. Определение длительности кровотечения

способ Дюка

Цель работы: научиться определять время кровотечения.

Нужно для работы: испытуемый, стерильные скарификатор и пинцет, спирт, йод, вата, фильтровальная бумага.

Проведение работы:

1. Проколоть кожу пальца так, чтоб на ее поверхности выступила капля крови (внутренней средой организма человека и животных).

2. Любые 30 с прикладывать фильтрованную бумагу к капле крови (внутренней средой организма человека и животных) (не прикасаясь к ранке).

3. Отметить, через какое время фильтровальная бумага не станет впитывать образованная жидкой соединительной тканью. Состоит из плазмы и форменных элементов: клеток лейкоцитов и постклеточных структур: эритроцитов и тромбоцитов»>кровь (внутренняя среда организма, образованная жидкой соединительной тканью. Состоит из плазмы и форменных элементов: клеток лейкоцитов и постклеточных структур: эритроцитов и тромбоцитов).

4. В протокол записать ход работы. Приобретенные результаты сопоставить с физиологической нормой. В норме скорость кровотечения по Дюку составляет 2-4 минутки.

Работа №10. Определение группы крови (внутренней средой организма человека и животных)

Цель работы: ознакомиться с принципом определения группы крови (внутренней средой организма человека и животных) и найти ее у 1-го из студентов.

нужно для работы: испытуемый, особая глиняная (либо эмалированная) пластинка с ложбинками, обычные сыворотки I, II, III группы крови (внутренней средой организма человека и животных), маркированные пипетки, предметное стекло либо стеклянные палочки, стерильный скарификатор и пинцет, спирт, вата, йод.

Рис. 4. Определение группы крови (внутренней средой организма человека и животных)

Проведение работы:

1. Нанести на белоснежную глиняную пластинку в углубления с помощью пипетки по большенный капле сыворотки (для каждой сыворотки отдельная пипетка) I. II и III групп крови (внутренней средой организма человека и животных) (рис. 4).

2. Создать прокол пальца и добавить в каждую каплю сыворотки каплю крови (внутренней средой организма человека и животных), перемешать (соотношение сыворотки и крови (внутренней средой организма человека и животных) 10:1). Капли крови (внутренней средой организма человека и животных) с пальца снять различными углами предметного стекла либо различными стеклянными палочками (не путать!).

3. Подождать 5 минут, временами покачивая пластинку, опосля чего же разглядеть результаты.

4. Найти по образованию комочков склеенных эритроцитов наличие агглютинации в каждой из капель.

5. По наличию либо отсутствию агглютинации в сыворотках II и III групп крови (внутренней средой организма человека и животных) создать заключение о наличии либо отсутствии в эритроцитах исследуемой крови (внутренней средой организма человека и животных) агглютиногенов А и В. На основании этого отдать заключение о групповой принадлежности крови (внутренней средой организма человека и животных).

6. По наличию либо отсутствию агглютинации эритроцитов исследуемой крови (внутренней средой организма человека и животных) в контрольной обычной сыворотке I группы проконтролировать корректность определения группы крови (внутренней средой организма человека и животных).

7. В протоколе коротко обрисовать ход работы, зарисовать пластинку с плодами агглютинации, прийти к выводу о групповой принадлежности исследуемой крови (внутренней средой организма человека и животных).

Работа №11. Определение резус-принадлежности

Цель работы: познакомиться с принципом экспресс-методики определения резус-принадлежности крови (внутренней средой организма человека и животных) человека.

Нужно для работы: Целиклон Анти-Д супер, пипетки, стерильные скарификаторы и пинцет, спирт, иод, вата.

Проведение работы:

1. На пластинку со смачиваемой поверхностью нанесите огромную каплю (около 0,1 мл.) реагента. расположите небольшую каплю 0,01-0,05 мл. исследуемой крови (внутренней средой организма человека и животных) и смешайте тканью. Состоит из плазмы и форменных элементов: клеток лейкоцитов и постклеточных структур: эритроцитов и тромбоцитов) с реагентом. Более большая агглютинация наблюдается при использовании эритроцитов в высочайшей концентрации.

2. Реакция агглютинации начинает развиваться через 10-15 с., верно выраженная агглютинация наступает через 30-60 с. Внедрение нагретой до 37-40 градусов пластинки уменьшает время пришествия агглютинации. Результаты реакции учитывайте через 3 мин.

3. По наличию либо отсутствию агглютинации создать заключение о наличии либо отсутствии в эритроцитах исследуемой крови (внутренней средой организма человека и животных) резус-агглютиногена.

4. В протоколе коротко обрисовать ход работы, зарисовать наблюдаемую картину и прийти к выводу о резус-принадлежности исследуемой крови (внутренней средой организма человека и животных).

Целиклон Анти-Д супер предназначен для выявления Д антигена системы резус в эритроцитах человека.

Пластинку опосля смешения реагента с кровью (внутренней средой организма) рекомендуется не сходу, а через 20-30 с., что дозволяет за это время развиться наиболее полной большой лепестковой агглютинации.

Контроль специфики. Для контроля специфики реакции в каждую серию исследуемых эритроцитов нужно включать эталоны и Д положительные и Д отрицательные эритроциты

дыхания. Наружное дыхание

Нужно знать:

1. Суть процесса дыхания, его главные этапы. Механизм наружного дыхания. Биомеханика вдоха и выдоха.

2. Плевральная полость, ее полости. Модель Дондерса. Пневмоторакс.

3. Легочные объемы и легочные емкости, способы определения (спирометрия, спирография).

4. Легочная вентиляция (МОД), методы определения. Альвеолярная вентиляция. Физиологическое значение анатомического мертвого места.

5. Механизмы обмена газов в легких и тканях (схема). Причины, действующие на газообмен в легких: аэрогематический барьер, вентиляционно-перфузионный коэффициент, гравитационный фактор (зоны Веста). понятие альвеолярного мертвого места.

6. Типы вентиляции.

Главные понятия и определения

Главным источником энергии в организме являются вещества, в структуру которых входят макроэргические связи. До этого всего, к таковым субстанциям относится АТФ (аденозинтрифосфорная кислота). Израсходованные источники энергии восстанавливаются за счет утилизации питательных веществ, оканчивающим звеном восстановления является био окисление. Оно и составляет суть процесса дыхания. В итоге окисления питательных субстратов происходит поглощение кислорода и выделение углекислого газа, воды и энергии, которая употребляется на восстановление макроэргов.

У человека и млекопитающих сформировалась особая система органов дыхания, обеспечивающая поступление из окружающей среды кислорода и выведения из организма в атмосферу углекислого газа. Различают несколько шагов дыхания:

· Наружное дыхание — газообмен меж легкими и наружной средой;

· Легочное дыхание — газообмен меж легкими и кровью (внутренней средой организма);

· Транспорт газов кровью (внутренней средой организма) (дыхательная функция крови (внутренней средой организма человека и животных));

· Газообмен меж кровью (внутренней средой организма) и тканями, клеточками организма;

· Настоящее иди тканевое дыхание (о нем было сказано выше).

Наружное дыхание осуществляется за счет дыхательных движений, формирующих вдох и выдох. Главную роль легочной вентиляции играют дыхательные малая мышь«>мускулы, главными из которых являются диафрагма и межрёберные газов. В трахее, бронхах и бронхиолах он осуществляется методом конвекции.

В респираторных бронхиолах и альвеолярных ходах воздух движется медлительно и потому конкретно тут присоединяется диффузионный обмен, обусловленный градиентом парциальных давлений газов. Молекулы кислорода передвигаются в направлении альвеол, где Ро2 ниже, чем во вдыхаемом воздухе, а молекулы углекислого газа — в оборотном направлении. Легочная вентиляция — размер воздуха, проходящего через легкие за единицу времени (за 1 мин.) отсюда МОД — минутный размер дыхания.

Мертвое место — размер воздуха, приходящегося на вентиляцию просвета воздухоносных путей.

Внутриплевральное давление меньше атмосферного: на вдохе на 4-9 мм рт.ст., на выдохе на 2-4 мм рт.ст..

Дыхательная мускулатура.

Акт вдоха (инспирация) — процесс активный.

Акт выдоха (экспирация) в критериях покоя — процесс пассивный.

Альфа-мотонейроны диафрагмальной мускулы локализованы в шейных секторах спинного мозга (центральный отдел нервной системы животных и человека) — С2-С5. В момент возбуждения нейроны отправляют к мышечным волокнам ПД с частотой до 50 Гц (единица частоты периодических процессов в Международной системе единиц СИ) и вызывают их тетанус.

Мотонейроны межреберных мускул размещены в грудном отделе спинного мозга (центральный отдел нервной системы животных и человека) (Th1 — Th12) и представлены альфа- и гамма-мотонейронами. За счет гамма-мотонейронов происходит оценка степени податливости грудной клеточки к растяжению. Когда сила дыхательной мускулатуры недостаточна для акта вдоха, происходит активация проприорецепторов дыхательных мускул, а потом — как следствие — альфа-мотонейронов. (Палитра-мотонейроны регулируют чувствительность этих рецепторов.)

Линейная скорость воздушного потока максимальна в трахее — 98,4 см/с и мала в альвеолярных мешках — 0,02 см/с.

Содержание О2 в альвеолярной консистенции — 14 о.%.

Содержание СО2 в альвеолярной консистенции — 5,6 о.%. Оставшаяся часть альвеолярной газовой консистенции приходится на долю азота и весьма маленького количества инертных газов.

В атмосферном воздухе содержится 20,9 о.% кислорода, 0,03 о.% углекислого газа и 79,1 о.% азота.

В выдыхаемом воздухе содержится 16 о.% кислорода,4,5 о.% углекислого газа и 79,5 о.% азота.

Парциальное давление газов в альвеолах составляют: 100 мм рт.ст. для О2 и 40 мм рт.ст. для СО2.

in vivo 1г Hb связывает 1,34 мл О2 (так называемое число Хюфнера).

Напряжение СО2 в артериальной крови (внутренней средой организма человека и животных), поступающей в тканевые капилляры составляет 40 мм рт.ст.

У человека продолжительность размеренного выдоха на 10-20% больше продолжительности вдоха. Отношение продолжительности вдоха и общей продолжительности дыхательного цикла именуют инспираторным индексом.

Нормовентиляция — парциальное давление углекислого газа в альвеолах поддерживается в границах 40 мм рт.ст.

Гипервентиляция — усиленная вентиляция, превосходящая метаболические потребности организма. Парциальное давление углекислого газа меньше 40 мм рт.ст.

Гиповентиляция сниженная вентиляция по сопоставлению с метаболическими потребностями организма. Парциальное давление СО2 больше 40 мм рт.ст.

Завышенная вентиляция — хоть какое повышение альвеолярной вентиляции по сопоставлению с уровнем покоя независимо от парциального давления газов в альвеолах (к примеру: при мышечной работе).

Эупноэ — обычная вентиляция в покое, сопровождающаяся личным чувством удобства.

Гиперпноэ — повышение глубины дыхания, независимо от того, повышена либо снижена частота дыхания.

Тахипноэ — повышение частоты дыхания. При всем этом может быть развитие 2-ух его типов: 1) учащение и углубление — тахигиперпноэ, 2) учащение и уменьшение глубины — тахигипоноэ. Урежение дыхательного ритма брадипноэ

Брадипноэ — понижение частоты дыхания которое может развиваться в 2-ух вариантах: 1) урежение и углубление — брадигиперпноэ, 2) урежение и уменьшение глубины — брадигипноэ.

Апноэ — остановка дыхания, обусловленная отсутствием стимуляции дыхательного центра (к примеру: при гипокапнии).

Диспноэ — противное личное чувство дефицитности дыхания либо затрудненного дыхания (одышка).

Ортопноэ — выраженная одышка, сплетенная с застоем крови (внутренней средой организма человека и животных) в легочных капиллярах в итоге сердечной дефицитности. В горизонтальном положении это состояние утежеляется и потому лежать таковым нездоровым тяжело.

Асфиксия — остановка либо подавление дыхания, связанные основным образом с параличом (полное отсутствие произвольных движений, обусловленное теми же причинами, что и в случае пареза) дыхательного центра. Газообмен при всем этом резко нарушен: наблюдается гипоксия и гиперкапния.

Дыхательная аритмия (arhythmia respiratoria) — нарушение физиологической ритмичности следования дыхательных циклов. Быть может результатом обычной жизнедеятельности (труд, спорт, эмоциональное возбуждение, хохот, плач, речь, пение и др.) либо патологических действий (заразное работоспособности интоксикация, травмы, гипертермия, модифицированная газовая среда).

Парадоксальные дыхательные движения (paradoxos — греч., нежданный, странноватый) — синхронное с фазами дыхательного цикла движения части грудной клеточки либо диафрагмы, но с оборотной направленностью. Наблюдаются при периферическом параличе части дыхательных мускул в итоге присасывающего деяния субатмосферного давления в полости плевры. Парализованные мускулы пассивно втягиваются при вдохе и выбухают во время активного выдоха за счет энергии сокращения нормально функционирующих дыхательных мускул.

нужно уметь:

1. Найти объемы воздуха, составляющие актуальную емкость легких

2. Рассчитывать характеристики МОД и АВ для определения эффективности дыхания.

Работа № 12. Модель Дондерса

Цель работы: убедиться в значении отрицательного давления в плевральной полости в биомеханике вдоха и выдоха.

нужно для работы: лягушка либо белоснежная крыса, модель Дондерса, водяной манометр, препаровальный набор, узкая ровная игла, нити, кусок резинового шланга.

Модель Дондерса — стеклянный колокол, дно которого затянуто резиновой мембраной, и легкие звериного. Резиновая мембрана делает роль диафрагмы (рис. 5) При оттягивании мембраны вниз «размер грудной полости» возрастает, как при вдохе, при вдавливании ее вовнутрь колокола миниатюризируется, как при выходе.

Рис. 5. Модель Дондерса: 1 — колокол с легкими лягушки; 2 — резиновая мембрана; 3 — тройник; 4 — зажим; 5 — манометр

Проведение работы:

1. Лягушку обездвижить и укрепить на дощечке брюшком ввысь.

2. Удалить нижнюю челюсть и, захватив пинцетом подъязычную кость, отыскать голосовую щель, расположенную на гортанном возвышении.

3. Обшить края голосовой щели «кисетным швом».

4. Вытащить пробку из колокола и вставить стеклянную канюлю в голосовую щель. Снять нить вокруг шеи канюли и завязать двойным узлом.

5. Вскрыть полость теля лягушки и, поддувая воздух в канюлю, раздуть легкие. Канюлю закрыть пальцем либо зажать шланг, одетый на канюлю, и весьма осторожно отделить легкие вкупе с горлом. Пробку с канюлей и фиксированными легкими плотно вставить в гортань колокола.

6. Соединить боковой отросток колокола с манометром. Открыть кран зажима. Вести наблюдение за легкими. Вмять мембрану в полость колокола и перекрыть кран, мембрану отпустить. Следить за конфигурацией размера легких и показаниями манометра.

7. Медлительно оттянуть мембрану вниз («вдох»), а потом отпустить («выдох»). Проследить за показаниями манометра и переменами размера воздуха. Можно измерить и давление воздуха в легких во время «вдоха» и «выдоха», для этого необходимо соединить манометр с канюлей, на которую одеты легкие.

8. Сделать в «плевральной полости» начальное отрицательное давление, как в п.б. При вдавлении мембраны нужно плотно закрыть отводное отверстие на колоколе.

9. Меняя положение мембраны, следить за движениями легких и показаниями манометра.

10. В протоколе коротко записать ход работы. Зарисовать схему модели Дондерса и внести приобретенные результаты.

Работа №13. Спирометрия

Цель работы: ознакомиться с механизмом работы сухого спирометра и найти объемы воздуха, составляющие актуальную емкость легких (ЖЕЛ).

нужно для работы: испытуемый, сухой спирометр, мундштук, зажим для носа, вата, спирт.

Проведение работы:

1. Ознакомиться с устройством сухого спирометра.

2. Проверить, чтоб нулевая отметка шкалы находилась напротив стрелки.

3. Протереть мундштук ватой, смоченной спиртом.

]]>